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運行一個完美的自製SDS-PAGE凝膠的實用指南

SDS凝膠

作為生物化學家,我們經常跑步sds - page來分析我們的蛋白質。獲取一份“像樣的”出版凝膠是一項重複而乏味的任務(特別是當有這種凝膠的時候)西方的屁股但如果你知道竅門就不會了!

以下是我的完美凝膠指南:

把玻璃板擦幹淨

小心盤子上的凝膠碎片,因為它是造成凝膠泄漏和缺陷的小惡魔。

如果你正在處理敏感樣品(例如rna -蛋白質複合物),一定要記得噴灑少量70%乙醇/DEPC水放在盤子上,擦幹。

停止SDS-PAGE凝膠泄漏(第一個檢查點)

我在這裏使用的是BioRad術語,但從技術上來說,它與其他品牌的設置是相同的。

遵循以下步驟,防止凝膠在聚合前泄漏:

  • 將玻璃板插入(綠色)澆鑄框架,同時將框架放置在平麵上(如實驗室工作台)
  • 打開“門”,把盤子鎖在適當的位置
  • 用你的手指感受盤子的底部——當正確對齊時,兩個玻璃盤子應該完全平行
  • 將鑄造架安裝在透明支架上,向腔內注少許水,檢查是否滲漏
  • 把水倒出來(不要拆卸裝置),然後準備倒入丙烯酰胺混合物

覆蓋分離凝膠

通常的做法是,在凝膠聚合之前,在分離凝膠上覆蓋一層“液體”,以確保兩層之間的界麵均勻。這是很重要的,以確保你的樣品是在相同的起點,因為他們開始沿著分離凝膠比賽。

這種“液體”可以是異丙醇、乙醇或水。如果你使用的是有機溶劑,確保你清除任何殘留滴濾紙後,分離凝膠設置。如果你用的是水,確保你慢慢地覆蓋它,否則它會直接與丙烯酰胺混合(但好的一麵是,你不必太擔心殘留的水)。在任何情況下,保持這層“液體”每75mm厚的迷你凝膠500 μ l以下。

組裝盒式(第二檢查點,防止泄漏)

我們在這裏討論的是另一種類型的泄漏,即運行的緩衝液從陰極泄漏到陽極,或者如我們所知,從內室泄漏到外室。

重要的是,當緩衝層在陰極中運行較低時,當阻力建立時,要停止泄漏。這將導致整個凝膠係統迅速升溫,導致:

  • 微笑/皺眉凝膠
  • 弄髒的車道
  • 解離sds抗複合物,否則可以在凝膠上觀察到!

事實上,防止凝膠係統滲漏是很容易的。確保玻璃板上沒有凝膠碎片,玻璃板牢固地壓在墊片上的橡膠管上。關鍵是板與油管之間的接觸。保持良好的接觸,避免泄漏。

如果你對此有點懷疑(就像我一樣!),把陰極裝滿水,看看兩分鍾後是否有明顯的水位下降。如果沒有,你可以去!

了解重用緩衝區的風險

重複使用你的凝膠運行緩衝液是經濟的,但是你儲存這些緩衝液的時間越長,重複使用的次數越多,汙染的幾率就越高。在最糟糕的情況下,你會在你的凝膠上看到垃圾或非特定的條帶,即使是在空車道上。為了避免這種情況,使用新鮮的緩衝液為陰極(內室),以使凝膠始終運行在幹淨的緩衝液。

不要為了速度而犧牲你的凝膠

越高電壓/電流/功率你用它來運行凝膠,你的樣品遷移得越快,但它也更有可能煮沸你的凝膠。

為了防止凝膠過熱,請參考製造商的說明,選擇合理的電壓。記住要注意不同成分的凝膠所需要的特定條件。

運行後,用你的手指(拔掉插頭,戴上手套!!)感受陰極中的緩衝,以檢查設置是否過熱。

如果你想快速使用凝膠,可以考慮在凝膠罐裏放一個冰袋,或者把整個裝置移到冰冷的房間

不要把凝膠弄破

一切都歸結於此。你的SDS-PAGE完成了,你需要從玻璃板上取下精致的凝膠。用刮板輕輕地將兩片玻璃分開。不要違背自然規律——讓你的凝膠選擇它想堅持的哪一邊。再次借助刮板,輕輕地將凝膠滑出到容器中。練習(和耐心)造就完美。

當使用非常精細的凝膠(低比例/梯度凝膠)時,這裏有一個方便的技巧:在你把玻璃板分開後,把有凝膠的盤子放在緩慢流動的水中,用一個容器抓住滑動的凝膠。

好了,一個完美運行的凝膠,可與昂貴的預製凝膠相媲美。想象一下,當你把每一種凝膠都做到完美時,你將節省多少時間和精力。

好運!

要了解更多關於完成實驗的提示、技巧和技巧,請查看188bet手机版APP咬大小的生物DIY在實驗室中心

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圖片來源:艾倫•萊文

2的評論

  1. 雅各 2015年11月19日晚上10點21分

    我剛剛開始使用SDS-PAGE的樂趣,但不得不自己解決相當多的問題,因為周圍沒有人知道任何關於運行凝膠(耶!)首先,我的迷你裝置泄漏了,所以我使用了輔助膜的技巧,它仍然泄漏,所以我訴諸於使用少量(約300 μ l)的溶解凝膠,等待它凝固,然後添加休息。它並不完美,我仍然懷疑它是否幹擾了我的化驗,但它讓我堅持下去。其次,我的凝膠變得很有微笑感,所以我過量使用了它,使用了冷藏緩衝液和冷包在外麵。我還是有一些汙點,希望有更明顯的條紋,但我正在實現……

    另外,我沒有溴酚藍,懶得訂購,所以我使用SDS-PAGE加載緩衝沒有染料,並在運行凝膠之前直接添加一些DNA加載緩衝樣品。

    • 索漢姆玻色 2016年6月15日中午12:36分

      嗨雅各……我曾經有一些凝膠泄漏的問題(我沒有biorad儀器),這裏是我如何克服這個問題....
      首先,將玻璃板與中間的墊片對齊(記得先用水清洗,然後用70%乙醇,然後完全幹燥)。將玻璃板的三麵(即右側、左側和底部)用STEEL GRIP(通常稱為黑色膠帶)完全包裹。然後準備溶解凝膠混合物,但不要添加APS。將1毫升的混合物放入1.5毫升的eppendorf中。添加3-4倍通常添加在凝膠混合物中的APS。快速混合eppendorf中的內容物,從一側在玻璃板之間加入800 μ l(也可以從eppendorf中剩餘的200 μ l中確認)…它會很快凝固,我們稱之為密封膠。然後加入溶解凝膠,再根據實驗需要疊加凝膠。你可以在轉移之前剪掉密封膠,以防發生western blot。這個密封劑部分不會影響你的實驗…希望這對你有幫助

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